Aspectos biológicos y etológicos de las principales especies constituyentes del complejo de pentatómidos fitófagos del cultivo de soja en la Argentina y su manejo integrado. Revisión bibliográfica

Ing. Agr. Guillot Giraudo, Walter

Especialista en Manejo Integrado de Plagas en Cultivos Extensivos
Facultad de Agronomía
Universidad Nacional de La Pampa

Primera edición - EPUB2.0 - ISBN 978-950-863-427-6

Editorial EdUNLPam - 19.08.2021

Guillot Giraudo, Walter
Aspectos biológicos y etológicos de las principales especies constituyentes del complejo de pentatómidos fitófagos del cultivo de soja en la Argentina y su manejo integrado : revisión bibliográfica / Walter Guillot Giraudo. - 1a ed compendiada. - SantaRosa : Editorial de la Universidad Nacional de La Pampa, 2021.
Libro digital, EPUB - (Publicación de Tesis o Trabajos Finales de Grado, Tesis de Maestría, Tesis de Doctorado y Trabajos ; 6)

Archivo Digital: descarga y online
ISBN 978-950-863-427-6
1. Agronomía. I. Título.
CDD 630

Índice de figuras

Figura 1. Piezodorus guildinii. Huevos sobre vainas de soja.

Figura 2. Piezodorus guildinii. Huevos sobre hoja de soja recién eclosionados junto a ninfas de estadio I recién nacidas.

Figura 3. Piezodorus guildinii. Adulto.

Figura 4. Nezara viridula. Adulto, forma smaragdula sobre soja.

Figura 5. Huevos de Nezara viridula sobre soja.

Figura 6. Nezara viridula. a) Ninfas en estadio III (Forma Oscura). b) Estadio ninfal V.

Figura 7. Edessa meditabunda. a) Ninfas de estadio I recién nacidas juntos a los huevos eclosionados; b) Estadio ninfal IV.

Figura 8. Edessa meditabunda. Adulto.

Figura 9. Adulto de Dichelops furcatus.

Figura 10. Nezara vididula. Adulto parasitado por una mosca de la familia Tachinidae.

Índice de tablas

Tabla 1. Daños de chinches según etapa fenológica del cultivo de soja.

Tabla 2. Umbrales económicos para el complejo de hemípteros que atacan al cultivo de soja durante el periodo reproductivo R3 – R5.5.

Tabla 3. Equivalente Chinche verde para las distintas especies de Chinches.

Tabla 4. Niveles de acción según la especie de chinche, estado fenológico del cultivo de soja y espaciamientos entre hileras.

Tabla 5. Listado de parasitoides por huésped del complejo de chinches de la soja.

Tabla 6. Listado de parasitoides de Euschistus heros en Brasil.

Tabla 7. Predadores de N. viridula y de P. guildinii.

Tabla 8. Hongos entomopatógenos que afectan a las distintas especies de hemípteros del complejo.

Tabla 9. Principios activos registrados para el control de las distintas especies del complejo de chinches fitófagas en el cultivo de soja en Argentina.

AGRADECIMIENTOS

A la Dra. Estela M. Baudino por su apoyo, tiempo y sus valiosas sugerencias.

A la Facultad de Agronomía (U.N.L.Pam) y a su escuela de posgrado por brindar los medios para poder desarrollar los estudios de posgrado.

A los evaluadores Mgter. Corró Molas, Andrés y Dr. Diez, Fernando por su tiempo y sus sugerencias que ayudaron a mejorar este trabajo.

A mi familia y amistades por su incondicional apoyo.

A los autores que me han acercado sus trabajos.

A la Editorial de la Universidad Nacional de la Pampa por brindar la oportunidad de que nuestro esfuerzo sea publicado.

RESUMEN

El cultivo de soja es uno de los cultivos más importantes del mundo en cuanto a producción, valor económico y la relevancia de sus productos y subproductos como posibles apaleadores de la hambruna ante el crecimiento continuo de la población global. En Argentina, se registraron más de 40 especies de plagas insectiles de este cultivo siendo una de las más relevantes las chinches pentatómidas Piezodorus guildinii, Nezara viridula, Edessa meditabunda y Dichelops furcatus. En algunas regiones se ha detectado la presencia de Euschistus heros. La presente revisión sintetiza aspectos biológicos y etológicos de las especies de hemípteros citadas, como también cuestiones de manejo integrado en los sistemas sojeros tales como método de muestreo, umbrales de daño, enemigos naturales y un listado de productos fitosanitarios para su control.

ABSTRACT

Soybean is one of the most important crops worldwide in terms of production and economic value. Its products and byproducts are also of importance to beat famine caused by lack of food in a growing population. In Argentina, more than 40 insect pests of this crop have been registered, being the most relevant pentatomids stink bugs Piezodorus guildinii, Nezara viridula, Edessa meditabunda and Dichelops furcatus. In some regions, Euschistus heros has also been detected. The present bibliographic review summarized biological and ethological aspects of the hemipteran species cited and integrated management concerns in soybeans systems, such as sampling method, damage thresholds, natural enemies and a list of phytosanitary products for their control.

INTRODUCCIÓN

La soja (Glycine max (L.) Merr.) es utilizada para la alimentación de la humanidad desde hace más de 4000 años, siendo desde ese momento considerada como la leguminosa más relevante de la civilización (Gazzoni, 1995). Este cultivo ha crecido sosteniblemente desde sus inicios en el país en lo que respecta a producción y superficie cultivada, ocupando una región con una enorme variedad de condiciones climáticas y flora (Stadler et al., 2006; Igarzábal et al., 2014). Durante la campaña 2015 - 2016 en nuestro país se sembraron 20.479.094 hectáreas, de las cuales se cosecharon 19.504.648 hectáreas con un rinde promedio de 3.015 kg/ha alcanzando una producción total de 58.799.258 toneladas (MAGyP, 2017).

Luego del algodón, la soja es el cultivo que sufre mayores ataques de plagas animales, en los que encontramos una lista de más de 40 especies fitófagas de insectos que se alimentan de distintos órganos de la oleaginosa en diferentes áreas de Argentina, provocando daños físicos directos que oscilan en torno al 10 % (Aragón, 2002b; Huerga & San Juan, 2005; Massaro, 2008).

Los Heterópteros, dentro del Orden Hemíptera, son un grupo de insectos denominados comúnmente como chinches (Frana et al., 2008). Este grupo está compuesto por 42.347 especies (Henry, 2009). Incluye la familia Pentatomidae, muy importante para la agricultura porque a ella pertenecen varias especies perjudiciales para los cultivos, ya sea por la importancia económica debida a sus daños sobre las semillas en formación o por los costos de su manejo (Schaefer & Panizzi, 2000; Frana et al., 2008). Estas especies fitófagas causan daño sobre los cultivos tanto en su vida juvenil como en su vida adulta (Rizzo, 1976).

Si bien en Argentina se han registrado 206 especies y 85 géneros de Pentatomidae, el complejo de chinches fitófagas que afecta al cultivo de soja está compuesto por algunas pocas especies, Nezara viridula (Linnaeus, 1758) (Chinche verde), Piezodorus guildinii (Westwood, 1837) (Chinche de las leguminosas), Dichelops furcatus (Fabricius, 1775) (Chinche de los cuernitos) y Edessa meditabunda (Fabricius, 1794) (Alquiche chico), en algunas regiones sojeras centro de nuestro país se ha detectado la presencia ocasional de Euschistus heros (Fabricius, 1788) (Chinche marrón o Brasileña) (Frana et al., 2006; Grazia & Schwertner, 2008; Massoni et al., 2008; Saluso et al., 2011; Massaro & Molinari, 2013; Vignaroli et al., 2016). Las chinches son las plagas más importantes en el período reproductivo de soja y se presentan en todas las zonas de cultivo de soja variando su importancia según la región (Massoni et al., 2008; Massoni & Frana, 2008; Gamundi & Sosa, 2008; Molinari et al., 2013; Mitidieri et al., 2014). Algunas especies de este complejo pueden presentarse en elevadas densidades poblacionales. En esas condiciones causan pérdidas en rendimiento y calidad de grano, como también del síndrome de retención foliar y tallo verde de soja (Bodrero et al., 2002; Astegiano et al., 2002). Sin embargo, Mascarenhas et al. (1988) indican que debido a que el origen de este síndrome es un desequilibrio entre la estructura vegetativa (fuente) y la reproductiva (destino), cualquier factor (biótico o abiótico) que impida la formación de una adecuada cantidad de granos puede causar este fenómeno. Frana et al. (2006) en su informe sobre la campaña 2003/2004 en la región centro de Santa Fe, comprobaron que los lotes que presentaron dicho síndrome fueron afectados por un estrés térmico – hídrico y no por insectos. Condiciones de altas temperaturas durante las etapas finales del llenado de grano en combinación con estrés hídrico favorecen la presencia de síntomas del Síndrome de tallo verde en sitios dentro del mismo lote (Cencig, 2002; Ghironi & Corró Molas, 2013).

Las dos especies principales del complejo son N. viridula y P. guildinii en cuanto a presencia e incidencia económica (Sosa, 2002; Edelstein et al., 2008; Gamundi & Sosa, 2008; Bodrero et al., 2002 & Frana et al., 2006). En general, las densidades poblacionales de estas especies se han incrementado por sobre las demás, concentrándose los ataques en etapas reproductivas (Mitidieri et al., 2014). Frana et al. (2008) sostienen que las chinches se transformaron en una plaga clave para el cultivo de soja debido a diversos factores entre los que se pueden mencionar: la soja propiamente dicha como cultivo dominante del paisaje, la utilización de variedades de distinto grupo de madurez, fechas de siembra escalonadas, los altos valores de mercado de la producción y por lo tanto, umbrales de daño más bajos. A partir de la introducción de variedades con tecnología Bt, las poblaciones de chinches en el cultivo de soja se incrementaron (Ferreira Soria et al., 2010). Esto puede deberse a un menor número de tratamientos con insecticidas para lepidópteros que tenían indirectamente un efecto sobre apariciones tempranas de chinches (Igarzábal et al., 2014).

Ante todo lo planteado anteriormente, se identifica a las especies fitófagas pertenecientes a la familia Pentatomidae (Hemiptera) como una de principales plagas del cultivo de soja, a las cuales hace falta conocer en diversos aspectos para poder diseñar estrategias en el marco del Manejo Integrado de Plagas. Frente a este escenario, se plantea a continuación el objetivo de este trabajo final integrador.

OBJETIVO

Revisar y sintetizar información disponible de las especies Nezara viridula (Chinche verde), Piezodorus guildinii (Chinche de las leguminosas), Dichelops furcatus (Chinche de los cuernitos), Edessa meditabunda (Alquiche chico) y Euschistus heros (Chinche Marrón o Brasileña)  enfatizando aspectos biológicos, etológicos y de manejo integrado.

METODOLOGÍA

Se realizó una revisión sistemática de artículos científicos consultando diversas bases de datos online, libros y manuales en formato papel donde se encuentran detallados aspectos referidos a las especies de hemípteros del complejo en estudio, cómo sobrellevan el invierno, su dispersión, colonización y distribución en el cultivo de soja, cuestiones de preferencia, daños, su manejo en el contexto del Manejo Integrado de Plagas, monitoreo, umbrales para la toma de decisiones, control biológico por parasitoides, predadores y entomopatógenos, como también sobre control químico. No existieron restricciones en cuanto a antigüedad de las publicaciones o de idioma. Los artículos se revisaron de manera completa si su título y resumen resultaron de relevancia a la temática en estudio. En cuanto al criterio de inclusión, se priorizó los trabajos de investigadores reconocidos, ya sea que estuviesen como primer autor o no. Se excluyeron datos que se encuentren en foros o páginas web agropecuarias de divulgación general, a excepción que sus artículos presenten debidamente citada a la fuente.

ESPECIES DEL COMPLEJO

Piezodorus guildinii (Westw.)

Comúnmente es denominada roña o chinche de la alfalfa y posee gran difusión a nivel mundial abarcando los países de Estados Unidos, Cuba, Guatemala, Panamá, Paraguay, Brasil, Jamaica, Granada, Haití, Uruguay y Argentina siendo generalmente plaga de soja en América del sur, África y Oriente (Rizzo, 1976; Aragón & Molinari, 1997; Panizzi, 2004a; Corrêa Ferreira, 2008; Castiglioni et al., 2008). P. guildinii (Westwood) sustituyó con el tiempo a N. viridula en su rol de especie dominante en soja, producto de su capacidad de adaptación al medio y de su estrategia para invadir y establecerse en el cultivo, convirtiéndose en la especie que causa los daños más severos en este cultivo (Panizzi, 1980; Massoni & Frana, 2006b; Stadler et al., 2006). En enero y febrero esta especie suele ser predominante en lotes de soja de siembra temprana aunque, prevalece tanto en siembras tempranas y tardías provocando severas pérdidas en Brasil y Argentina (Giorda & Baigorri, 1997; Aragón & Molinari, 1997).

El ciclo de vida se cumple en 35 - 40 días (Fraga & Ochoa, 1972). En Brasil posee un ciclo anual multivoltino con 3 o más generaciones y alta tasa reproductiva (Cividanes & Parra, 1994b; Corrêa – Ferreira & Panizzi, 1999). En cultivares de grupo V largo, Massoni y Frana (2006a), en Argentina, registraron 2 generaciones durante el período reproductivo. En Santiago del Estero posee cinco generaciones anuales y cada hembra puede hacer hasta diez oviposiciones colocando un total de 130 - 170 huevos (Rizzo, 1976). Los huevos (Figura N° 1. Ver apéndice) son depositados agrupados en cantidades que varían de 10 a 30 (varía en rango entre los diversos autores revisados) dispuestos en dos hileras paralelas sobre hojas, flores, tallos, ramificaciones y preferentemente sobre frutos de sus plantas huéspedes y por lo general en la parte inferior de la planta durante los meses de septiembre, octubre, diciembre y enero (Fragas & Ochoa, 1972; Rizzo, 1976; Panizzi & Smith, 1977; Vincini & Alvarez Castillo, 2000; Frana et al., 2008; Sosa Gomez et al. 2006; Vincini & Alvarez Castillo, 2000; Massaro, 2008; Massoni & Frana, 2008; Saran, 2012). Temple et al. (2016) encontraron que la interacción estructura de la planta y grupo de madurez altera la oviposición de P. guildinii con una mayor masa de huevos en hojas en Grupos de Madurez (GM) IV y más en vainas en GM V. Además, la proporción de sexos aumentó 1,4 hembras por cada macho en R5 coincidiendo con el periodo de oviposición, sólo el 29,9% de grupos de huevos en GM IV y el 18,3% de grupos de huevos en GM V fueron ovipuestos en los 35 cm superiores de la canopia de soja. Los huevos eclosionan a los siete u ocho días luego de ser colocados (Rizzo, 1976).

Los periodos ninfales (Figura N° 2. Ver apéndice) transcurren en 25 – 33 días en total (Rizzo, 1976; Massoni et al., 2008) pero según Aragón et al. (1997) el período ninfal puede ser de 30 - 40 días. Gómez et al. (2013) evaluaron el desarrollo de ninfas de P. guildinii alimentadas con distintas dietas obteniendo una duración de 35,09 días para la dieta en base a Phaseolus vulgaris y 23,60 días y menor mortalidad con una dieta mixta de Glycine max, Arachis hipogaea y Phaseolus vulgaris. En el mismo estudio, las dietas artificial y natural en base a Arachis hipogaea no permitieron el desarrollo de ninfas, mientras que la de mejor desempeño reproductivo fue con la dieta natural mixta de Glycine max, Phaseolus vulgaris y Ligustrum lucidum.

Los adultos (Figura N° 3. Ver apéndice) pueden tener una longevidad total de 50 días sobre soja (media de hembras y machos) mientras que en los meses benévolos los adultos pueden vivir alrededor de un mes extendiéndose apreciablemente su vida adulta en época invernal (Rizzo, 1976; Massoni & Frana, 2005; Massoni et al., 2008).

Las ninfas y adultos de esta especie se desarrollan a su máximo potencial cuando se alimentan con vainas de los estados fenológicos de soja R5 y R6 (Oliveira & Panizzi, 2003). Los adultos y ninfas se alimentan de vainas causándoles daño y provocando semillas chuzas (Rizzo, 1976). P. guildinii provoca mayores daños sobre el cultivo de soja  debido a que posee una agresividad superior y es menos susceptible a los insecticidas que N. viridula (Iannone & Leiva, 1994; Cingolani et al., 2014). Los adultos y ninfas se alimentan de vainas causándoles daño y provocando semillas chuzas pudiendo presentar un mayor potencial de daños con marcada capacidad para causar retención foliar, en comparación con otras chinches comunes de cultivo de soja. (Rizzo, 1976; Boethel et al., 2000; Sosa Gomez et al., 2006; Corrêa – Ferreira et al., 2009).

Nezara viridula (L.)

Esta especie cosmopolita, cocida comunménte como chinche verde en Argentina, está presente en América, Europa, África, Asia y Oceanía (Rizzo, 1976; Monetti et al., 2008). Es un pentatomido polimórfico, existen tres tipos básicos, la forma smaragdula (Cuerpo totalmente verde (Figura N° 4. Ver apéndice), la forma torquata (Cuerpo verde con callosidades amarillentas en la zona lateral y media de la cabeza y en el pronoto) y la forma aurantiaca (Cuerpo de coloración naranja o dorada) (Vivian & Panizzi, 2006). Esta chinche se alimenta de diversas plantas cultivadas y no cultivadas desde vegetales hasta árboles y se establece como una plaga de cereales, legumbres y vegetales en todo el mundo llegando a ser el pentatómido dominante durante la etapa de expansión de la soja en Sudamérica y plaga clave del cultivo de soja (Vincentini & Jiménez, 1977; Panizzi, 1997; Panizzi et al., 2000a; Serra & La Porta, 2001; Frana et al., 2008; Gamundi & Sosa, 2008).

En época estival la duración del período desde huevo a adulto es de aproximadamente 35 días pudiendo llegar a desarrollarse, para la latitud de Buenos Aires, tres o cuatro generaciones al año (Rizzo, 1976; Panizzi et al., 2000a). La hembra coloca una masa de huevos en el envés de las hojas distribuidos en un grupo de varias hileras que posee una disposición de forma hexagonal (Figura N° 5. Ver apéndice) y en un número que va desde los 55 hasta los 105 en total (Rizzo, 1976; Massaro, 2008; Sosa Gomez et al., 2006; Saran, 2012). En un estudio de monitoreo a campo combinado con un cálculo retroactivo de grados - día acumulados, Massoni & Frana (2008) estimaron la probabilidad de fechas de desoves para N. viridula y las ubicaron en los meses de septiembre, octubre, diciembre, enero y marzo. Los huevos eclosionan entre los cinco y once días desde la oviposición dependiendo de la temperatura ambiental y posee cinco estadios ninfales (Figura N° 6. Ver apéndice) que pueden durar entre 25 y 60 días. La duración de la vida adulta es muy variable, no inferior a un mes en verano y cuatro o 5 meses para la última generación que aparece en otoño y que pasa el invierno, las cuales son los que van a copular en la siguiente primavera (Rizzo, 1976).

Los daños en los vegetales los causa al extraer savia e inyectarles saliva tóxica en sus huéspedes (Rizzo, 1976). En la mayor parte de las plantas hospedadoras se alimenta primariamente de semillas, vainas y frutos; además, cuando estos órganos están presentes el crecimiento poblacional de esta chinche es máximo (Jones et al., 2001). En soja provoca daños en vainas (Rizzo, 1976) y granos (Rizzo, 1972). Mangudo et al. (2008) sostienen que ante la ausencia de estos órganos buscarían un tejido menos preferido sin abandonar la especie hospedante preferida o buscar mejores ofertas nutricionales. Se ha comprobado una mayor supervivencia de ninfas y adultos de esta especie cuando son alimentadas con vainas con semillas completamente desarrolladas, estado fenológico R6 según Fehr & Caviness (1977), o estados posteriores (Panizzi & Alves, 1993). Existen menciones de esta especie como transmisora de agentes patógenos y se puede observar ocasionalmente el fenómeno fisiológico de retención foliar atribuible a la acción de esta chinche (Rizzo, 1976).

Edessa meditabunda (F.)

Es conocida comúnmente como Alquiche chico y se encuentra distribuida por América meridional y Cuba (Rizzo, 1976). Poseen dos o tres generaciones anuales y muestra un ciclo de vida superior en cuanto a duración y mayor mortalidad ninfal que P. guildinii y N. viridula siendo su período de desarrollo, bajo condiciones de laboratorio, de 52,2 días (Rizzo, 1971; Rizzo, 1976; Avalos & La Porta, 2001). La temperatura más apropiada para su reproducción es de 25 °C (Gonçalves et al., 2008). Una hembra puede colocar aproximadamente 70 huevos en grupos de alrededor de 14 huevos en cada postura, situándolos en el envés de las hojas y en las vainas de su plantas huéspedes adheridos entre sí y agrupados en forma ordenada en dos hileras contiguas (Rizzo, 1976; Frana et al., 2008; Sosa Gomez et al., 2006; La Porta, 2012). Los huevos eclosionan de manera simultánea entre los 4 - 8 días luego de la postura ocurriendo la totalidad de los nacimientos (Rizzo, 1971; Rizzo, 1976). El desarrollo ninfal (Figura N° 7. Ver apéndice) posee una duración de 50 – 65 días dependiendo de la alimentación y de las condiciones ambientales (Rizzo, 1971; Rizzo, 1976; Panizzi et al., 2000a).

La longevidad de los adultos (Figura N° 8. Ver apéndice) durante la temporada primavero – estival es breve ya que los machos mueren después de copular varias veces y las hembras una vez que finalizan las posturas, pero en términos generales, tienen una vida media de 30 a 40 días (Rizzo, 1971; Sosa Gomez et al., 2006). Los adultos de última generación viven parte del otoño, el invierno y la primavera, en esta última abandonan su diapausa sexual (Rizzo, 1971).

Edessa meditabunda se alimenta de savia de distintas plantas provocando un daño similar al que efectúan las demás chinches, pero generalmente no se producen ataques masivos (Rizzo, 1976). Igarzabal et al. (2014) sostienen que no existe información sobre la disminución en el rendimiento en el cultivo de soja que puede ser provocado por esta especie de chinche pero, los mismos autores establecen que a partir de la propuesta de umbrales de Iannone (2007), se puede inferir que su peligrosidad se podría deducir de manera indirecta ya que Iannone (2007) coloca a esta especie por encima de D. Furcatus y debajo de N. viridula.

Dichelops furcatus (F.)

Esta especie posee una amplia distribución en Argentina, generalmente se relaciona con daños en etapas tempranas del cultivo de maíz ya que inyecta toxinas en el tallo de las plántulas durante su alimentación causando reducción del stand o perjudicando el vigor, pero además se han observado perjuicios sobre plántulas de soja (Rizzo, 1976; Bianco, 1997; Igarzábal et al., 2014). El ciclo total posee una duración aproximada de 30 días cumpliéndose dos generaciones anuales a la latitud de Buenos Aires (Rizzo, 1976; Cruz, 2012;  Gassen, 2001). Las posturas pueden encontrarse en el envés de las hojas o en vainas del cultivo y poseen aproximadamente 14 huevos dispuestos en dos o tres hileras más o menos definidas (Saini, 1984; Sosa Gomez et al., 2006; La Porta, 2012). Poseen 5 estadios ninfales (Roza Gomes, 2010). Las ninfas y los adultos (Figura N° 9. Ver apéndice) se alimentan de las vainas dañando los granos, perjudicando el rendimiento y la calidad de soja (Sosa Gomez et al., 2006).

D. furcatus posee un menor potencial para afectar el poder germinativo de la semilla de soja si la comparamos con otras especies de hemípteros fitófagos como N. viridula, P. guildinii y E. heros y aún en altas densidades, la esta especie no afecta el tamaño de la semilla (Luna & Iannone, 2013).

Euschistus heros (F.)

Entre los Pentatomidae más comunes mundialmente que causan daños en soja se encuentra las especies del género Euschistus (Turnmonted, 1976; Sediyama et al., 1993). E. heros es una chinche típica de ambientes cálidos y su expansión en la distribución en el Hemisferio Sur podría deberse al aumento de comercio entre los países y en el área cultivada con soja sumada a la adopción de la siembra directa (Saluso et al., 2011; SINAVIMO, 2018). Su población aumentó dramáticamente difundiéndose en la mayor parte del territorio brasileño e incluso invadiendo nuestro país (Saluso et al., 2011). Actualmente se encuentra presente en Argentina, Brasil, Paraguay, Panamá y probablemente también en Uruguay y Bolivia (Panizzi, 2015). En Argentina se la conoce comúnmente como “Chinche marrón” o “Chinche Brasileña” y fue detectada por primera vez en cultivos de soja en el año 2001 en Oliveros (Santa Fe), luego en 2009 fue registrada en la provincia de Entre Ríos, en 2016 es reportada por la cátedra de Zoología de la Facultad de Cs. Agropecuarias (Universidad Nacional de Rosario) y en 2018 se encontró en la Provincia de Córdoba y en valores del 5 % en relación al total de adultos de todas las especies de chinches presentes (Saluso et al., 2011; Massaro & Molinari, 2013; Vignaroli et al., 2016; Flores & Balbi, 2018; SINAVIMO, 2018).

En Brasil y Paraguay, entre las especies que se encuentran frecuentemente en la soja, E. heros es considerada la más relevante en cuanto a abundancia y a pérdidas económicas dejando de ser una plaga considerada secundaria para obtener un lugar destacado en las últimas décadas mientras que en Argentina, en las regiones productoras de soja, no reviste el status de plaga y es considerada una especie ocasional (Panizzi, 1985; Panizzi & Rossi, 1991; Panizzi & Niva, 1994; Altamirano & Candia, 2008; Sosa Gómez et al., 2009; Molinari et al., 2013; Panizzi, 2015; Vignaroli et al., 2016).

Bajo las condiciones de producción brasileñas, E. heros presenta cuatro generaciones por año de las cuales, tres transcurren sobre el cultivo de soja y una cuarta generación sobre vegetación espontánea y en rastrojos antes de comenzar su diapausa invernal (Panizzi, 1997; Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999). Sin embargo, Panizzi (2015) sotiene que debido a la adopción masiva de sistemas de cultivo sin labranza y la incorporación de cultivos múltiples se agregaron generaciones adicionales. Su ciclo de vida de huevo a adulto posee una duración de entre 32 y 35 días (Mourâo & Panizzi, 2002). Costa et al., (1998) establecen un tiempo medio de desarrollo para ese período de 38.6 días y Cividanes (1992) de 28,4 días a 25 ºC. Los adultos pueden vivir en promedio 116 días pero pueden llegar a vivir desde 78 a más de 300 días (Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999; Saran, 2008; Panizzi et al., 2012). Villas Boas & Panizzi (1980) informan una esperanza de vida diferencial según sexo, siendo de 72 días para las hembras y de 120 días para los machos. El número promedio de huevos por hembra varia de 108.5 a 130.5, estos son colocados en pequeñas masas de color amarillo en forma de columna (dos hileras) y en número de 6 a 15 huevos sobre las hojas o en las vainas de soja (Villas Bôas & Panizzi, 1980; Costa et al., 1998; Saran, 2008; Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999; Panizzi et al., 2012; Molinari et al., 2013). En un estudio realizado por Costa et al. (1998) el período de incubación de los huevos fue de 7,1 días. E. heros presenta 5 estadios ninfales presentando el primer estadio comportamiento gregario, manteniéndose agrupadas sobre la masa de huevos sin alimentarse mientras que, en su segundo estadio inicia la alimentación con inserción del estilete en la superficie de las vainas y de los granos y es en esta instancia de desarrollo donde se detecta la mortalidad más elevada (Grazia et al., 1980; Costa et al., 1998; Molinari et al., 2013; Vignaroli et al., 2016). A partir del estadio tres, las ninfas causan daños a las semillas ya que en este período son más activas, voraces y comienzan a dispersarse (Grazia et al., 1980; Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999; Vignaroli et al., 2016).

INVIERNO Y DISPERSIÓN

Aunque existe poca información sobre el tema, es incorrecto pensar que una mayor área arbolada, refugio invernal de algunas chinches, puede incrementar la cantidad de chinches en soja. Al contrario, la mayor presencia de árboles en el paisaje reduce la cantidad de poblaciones de chinches en soja debido a una mayor cantidad de hospedantes (árboles y hierbas) e incremento de enemigos naturales como parasitoides y predadores (Edelstein et al., 2008). En el centro de Santa Fe las chinches de la soja pueden iniciar su actividad luego del invierno en cultivos perennes que pueden resultar de “puente verde” hacia lotes de soja (Massoni & Frana, 2008). Inviernos benignos favorecerían ataques tempranos de chinches y poblaciones más numerosas ya que inviernos rigurosos provocarían una menor supervivencia de los adultos invernantes, a su vez, las primaveras húmedas favorecen el desarrollo de N. viridula mientras que en primaveras secas deprimen a esta especie pero se incrementa la probabilidad de ocurrencia de P. guildinii (Porta, 2012; Igarzábal et al., 2014).

N. viridula está mejor adaptada a regiones de temperaturas más bajas atravesando el invierno al estado adulto, los que van a copular en la siguiente primavera (Rizzo, 1976; Cividanes & Parra, 1994a). En poblaciones de regiones templadas pasa por una etapa de diapausa invernal permitiéndole atravesar condiciones ambientales adversas refugiándose debajo de corteza de árboles y en viviendas o construcciones, la cual es regulada por el fotoperíodo y se asocia a un cambio de color del adulto desde el color verde a marrón que le permitiría camuflarse de los enemigos naturales en las cortezas de los árboles y puede ser utilizada como indicador de entrada y salida de diapausa (Denlinger, 1986; Danks, 1987; Koshiyama et al., 1994; Ali & Ewiess, 1997; Musolin & Numata, 2003). Aragón (2003) sostiene que en abril hasta principios de mayo la última generación de chinche verde alcanza el estado adulto y vuela hacia lugares protegidos. Como los adultos no se alimentan mediante su diapausa, previo a esta, acumulan lípidos como reserva que se consumirán durante ese periodo. A partir de septiembre, con el aumento de la temperatura y del fotoperíodo, comienzan a salir de sus refugios invernales (Coombs, 2004; Monetti et al., 2008).

Los adultos de D. furcatus pueden vivir hasta 6 meses desde el otoño hasta la primavera buscando plantas para alimentarse o un ambiente adecuado para su supervivencia, la cobertura de los rastrojos y malezas les brinda protección (Gassen, 2001; Canale & Ferreira, 2013; Igarzábal et al., 2014). P. guildinii y Edessa meditabunda sobrellevan el invirno al estado adulto, al llegar la primavera estos se activan sexualmente iniciando la cópula (Rizzo, 1976). En Brasil, E. heros completa su cuarta generación sobre la maleza Cajanus cajan (L.) Millsp. antes de entrar en diapausa, transitando este período bajo hojas muertas y restos de cultivo caídos en el suelo, donde permanece hasta la próxima primavera (Panizzi & Niva 1994; Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999).

COLONIZACIÓN DEL CULTIVO

Las poblaciones de insectos son producto de un proceso de colonización, adaptación, supervivencia y reproducción que ocurre en pocos días (Frana, 2008). Igarzábal et al. (2014) establecen que son dos los orígenes de las chinches presentes en los lotes, uno de ellos son los adultos que sobreviven al invierno en el rastrojo o malezas en el mismo lote y el segundo, la inmigración con posterior colonización desde otros lotes, árboles o malezas.

Las chinches invaden la soja en manchones en floración o antes y luego se dispersan en el cultivo coincidiendo con la formación de vainas detectándose los valores mínimos de densidad poblacional en los estados vegetativos de soja y los valores máximos en estados reproductivos del cultivo (Bodrero et al., 2002; Frana et al., 2006; Gamundi & Sosa, 2008). La dinámica poblacional de las chinches está sincronizada con el estado reproductivo de soja, N. viridula y P. guildinii presentan un marcado crecimiento poblacional a partir de floración mientras que E. meditabunda y D. furcatus irrumpen en el cultivo preponderantemente en la etapa vegetativa (Gamundi et al., 1996; Gamundi et al., 2003; Sturmer et al., 2007; Gamundi & Sosa; 2008). En Brasil, la colonización de soja por E. heros comienza en el estado fenológico de V6 alcanzando los mayores niveles poblaciones al final del periodo de llenado de granos mientras que, en la región pampeana se detecta a partir de estados de desarrollo finales del cultivo, durante los meses de marzo y abril (Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999; Massaro & Molinari, 2013). En cuanto a distanciamientos de siembra, cuando estos son menores las chinches son más abundantes ya que los adultos los colonizan más tempranamente (Gamundi & Perotti, 2008). La implementación de siembras tempranas con cultivares de ciclo corto permiten una concentración, colonización temprana y mayor crecimiento de las poblaciones de chinches durante la período de desarrollo del cultivo al proveerles alimento de manera anticipada (Craviotto et al., 2006).

DISTRIBUCIÓN EN EL CULTIVO

Las principales especies del complejo de chinches presentan distribución agregada, especialmente los estadios ninfales, mientras que los adultos evidencian un patrón de disposición espacial con tendencia aleatoria (Stadler et al., 2006; Trumper & Edelstein, 2006). N. viridula y P. guildinii durante la estación del cultivo de soja podrían dispersarse muy poco, solo unos cientos de metros en un periodo de tiempo de un mes y podrían volar 40 - 70 metros en días cálidos (Costa & Link, 1982; Sosa Gomez et al., 2005). La distribución espacial de E. heros también varía con la etapa de desarrollo que la chinche se encuentra atravesando, la distribución de las ninfas del primer al tercer estadio es agregada mientras que, las ninfas del cuarto y quinto y de la población adulta tienen un patrón de dispersión moderadamente agregado a aleatorio (Souza et al., 2013; Fonseca et al., 2014). Los resultados obtenidos por De Souza et al. (2018) se ajustan al patrón de distribución encontrados por la bibliografía antes mencionada para el caso de ninfas pero no así para el caso de los adultos, la distribución espacial de ninfas y adultos de E. heros es agregada y esta distribución es una característica intrínseca de la población de esta chinche ya que, al evaluarla en cultivares con diferente ciclo de maduración, los patrones de distribución espacial resultaron independientes de las diferentes etapas de desarrollo de los cultivares de soja.

En cuanto a la movilidad y distribución vertical en el interior de la canopia de soja, Mangudo et al. (2008) sostienen que existen factores que poseen influencia sobre estas variables, entre los cuales se pueden mencionar características propias de la especie del insecto tales como el grado de polifagia, características propias del cultivar como la arquitectura o la masa foliar y variables microclimáticas que afectan a los insectos. Es de suponer que las Chinches (Hemiptera: Pentatomidae) cambian su distribución vertical en la planta en respuesta a cambios en las condiciones ambientales, siendo lógico pensar que si el estrato superior de la canopia estuviera demasiado caliente para las chinches, estas podrían buscar refugio en la parte más baja en el dosel, sin embargo no se detectó una relación significativa entre temperatura y humedad relativa o la hora del día en la distribución vertical de las chinches en el dosel (Waite, 1980; Owens et al., 2013).

Las diferentes alturas del dosel pueden influir en la distribución del insecto (Owens et al., 2013). Es posible que la distribución vertical de las chinches pueda ser diferente en variedades de soja indeterminadas comparadas con variedades determinadas debido a diferencias en la localización y desarrollo de las vainas (Russin et al., 1987). Los cultivares de crecimiento indeterminado poseen una fructificación escalonada lo que se traduce en una oferta de frutos durante un período de mayor oferta y con un gradiente de desarrollo (R3 a R6) que permite la posible alimentación selectiva por parte de las chinches (Fehr & Caviness, 1977; Craviotto et al., 2006). Según Mangudo & Trumper (2006) los cultivares de soja de crecimiento determinado tienden a concentrar las chinches en el estrato medio mientras que en los cultivares con crecimiento indeterminado las chinches poseen una tendencia a distribuirse de manera más equitativa entre los estratos. Los mismos autores señalan que independientemente del hábito de crecimiento del cultivar de soja, la especie de chinche P. guildinii tiende a ubicarse más arriba que N. viridula en la canopia del cultivo de soja. También es posible que la densidad de chinches pueda influir en la distribución en un dosel (Owens et al., 2013).

PREFERENCIA

La mayoría de los hemípteros fitófagos son polífagos y prefieren alimentarse de flores, frutos inmaduros y semillas (Mangudo et al., 2008). P. guildinii es plaga de varias especies de plantas cultivadas y silvestres. En Argentina está asociada a 14 especies vegetales pero se alimenta principalmente de leguminosas, encontrándose entresus plantas huéspedes alfalfa, caupí, crotalaria, poroto japonés, soja, arvejas, lentejas y tréboles (Rizzo, 1976; Fraga & Ochoa, 1972; Serra & La Porta, 2001; Panizzi, 1997; Cordo et al., 2004; Gamundi & Sosa, 2008; Gómez et al., 2013). En el caso de N. viridula, ésta se encuentra asociada a 93 especies vegetales en nuestro país, lo que deja ver que se trata de una especie polifitófaga. Entre los principales huéspedes se pueden encontrar col, coliflor, repollo, nabo, rábano, zapallo, acelga, tártago, arroz, maíz, sorgo, alfalfa, poroto, arveja, haba, caupí, soja, tréboles, algodón, pimiento, tabaco, berenjena, papa, tomate y ramio mostrando preferencia por alimentarse y por oviponer sobre Fabaceae y Brassicaceae (Rizzo, 1976; Todd & Herzog, 1980; Bimboni, 1989; Cordo et al., 2004). Ni N. viridula ni P. guildinii perciben sustancias volátiles desde las vainas de soja, por lo cual, estas no influyen en la preferencia de dichas especies (Mangudo et al., 2008). Sin embargo, hay estudios que encuentran respuesta de las hembras de N. viridula a extractos químicos de soja que influyen sobre las ovoposiciones (Panizzi et al., 2004). Monina & Trumper (2012) llevaron a cabo un trabajo con las especies P. guildinii y N. viridula en el cual las mismas no mostraron una respuesta diferencial en el olfatómetro en cuanto a sustancias volátiles de vainas de soja, lo que sugeriría según los autores, que son incapaces de detectar sustancias volátiles de soja. Panizzi en una comunicación personal con Mangudo et al. (2008) comenta que N. viridula y P. guildinii prefieren alimentarse de semillas en formación del extremo proximal de las vainas en soja, lo cual se sospecha que es debido a una mayor concentración de azucares en esas semillas.

E. meditabunda también es una especie polifitófaga pudiéndose encontrar en papa, acelga, achicoria, pimiento, berenjena, tomate, alfalfa, soja, girasol, tabaco y vid (Chiesa Molinari, 1942; Rizzo, 1976). Las ninfas prefieren tallos u hojas antes que vainas y los adultos se alimentan sobre tallos (Panizzi & Machado Neto, 1992). D. furcatus puede hallarse en cultivos de alfalfa, soja, praderas y algunas hortalizas manifestando preferencia por algunas gramíneas como maíz, sorgo y trigo (Rizzo, 1976; Aragón, 2002a; Gamundi & Sosa, 2008).

Si bien Molinari et al. (2013) definen a E. heros como una especie cosmopolita, Panizzi & Rossi (1991) sostienen que pocas plantas son conocidas por ser su hospedante. Se alimenta de Fabaceae, Solanaceae, Brassicaceae y Compositae (Panizzi et al., 2000b). La soja es su hospedero principal (Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999) pero puede encontrarse alimentándose de algodón, girasol, maíz, así como de vegetación natural (Molinari et al., 2013; SINAVIMO, 2018). En Brasil, sus hospedantes incluyen Aesehynomene rudis Benth., Guisantes (Pisum sativum L.), Poroto (Phaseolus vulgaris L.) y Lupinus spp., tabaco (Nicotiana tabacum L.), Brassiea spp., Acanthospermum hispidum DC, Euphorbia heterophylla L., Cajanus cajan L., Amaranthus retroflexus L.; Helianthus annuus L. y Vassobia breviflora (Sendtn.) (Link & Grazia, 1987; Panizzi & Rossi, 1991; Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999; Medeiros & Megier, 2009; Panizzi & Oliveira, 2005). Panizzi & Rossi (1991) informan que Acanthospermum hispidum DC es una maleza valiosa para la supervivencia de esta chinche en Brasil y Molinari et al. (2013) sostiene que todos estos hospedantes brindan refugio, aportan alimento y favorecen la reproducción de la chinche marrón.

DAÑOS

El complejo de chinches de la soja puede causar una serie de daños que se resumen en la Tabla N° 1 (Ver apéndice).

La magnitud de los daños causados por las chinches depende de la especie de chinche de que se trate, el estado de desarrollo de la misma, el estado fenológico del cultivo y del nivel poblacional (Sosa & Gamundi, 2008; Massoni et al., 2008). En ataques tempranos del estado vegetativo pueden afectar al tallo pudiendo generar el quebrado del mismo o el vuelco de la planta pero en ataque en etapas reproductivas las chinches se alimentan de los granos ocasionando daños que se reflejan en un menor rendimiento y calidad de los mismos (Berlote et al., 2003; Link et al., 2006). Al succionar los granos, las chiches provocan su necrosis, deformaciones o manchas oscuras en ellos alterando sus propiedades nutricionales y organolépticas (Mangudo et al., 2008). Si las chinches se alimentan durante los primeros estadios de desarrollo del grano se produce el aborto del crecimiento del mismo, caídas de vainas, semillas pequeñas, deformadas; en cambio si se alimentan de granos con mayor desarrollo (R6) se observa arrugamiento, depresiones con manchas blancas o marrones (Daugherty et al., 1964; Corrêa Ferreira & Azevedo, 2002; Gamundi et. al, 2004). El vaneo de frutos en soja puede ser tal que pueda limitar la producción y en algunos casos generar pérdidas totales (Vicentini & Jiménez, 1977). Las mayores pérdidas se producen en el período comprendido entre los estados fenológicos de soja R3 y R4, sin embargo varios estudios indicarían que el período crítico del daño se encontraría en el periodo comprendido entre los estados fenológicos R4 y R5.5 (Daugherty et al., 1964; Todd & Turnipseed, 1974; Miller et al., 1977; Yeargan, 1977; Panizzi et al., 1979; McPherson et al., 1979; Russin et al., 1987; Brier & Rogers, 1991; Iannone, 1992; Corrêa Ferreira & Panizzi, 1999; Boethel et al., 2000; Aragón & Flores, 2006).

Las chinches al picar también impiden el desarrollo normal de semillas pequeñas y en las grandes pueden matar el embrión reduciendo el poder germinativo de las mismas (Mangudo et al., 2008). La ubicación de la lesión posee una mayor importancia que la cantidad de lesiones en los granos destinados a semilla, si la picadura resulta sobre el hipocótilo afecta la capacidad de germinar anulándola, en cambio si la lesión se produce sobre los cotiledones se verá afectado el vigor, la sanidad y la emergencia (Jensen & Newsom, 1972; Gamundi & Sosa, 2008). Otra consecuencia de la picadura de estos heterópteros es la modificación de la relación del contenido de proteína/materia grasa, ya que los granos afectados aumentan su contenido en proteína disminuyendo su contenido en aceite (Bimboni, 1978; Gamundi et al., 2004; Gamundi & Sosa, 2008). Además, los granos dañados poseen una proporción de ácidos linoléico, palmítico y esteárico mayor y menor cantidad de la fracción de ácido linolénico en comparación con granos sanos, lo que lleva a decir que se produciría una modificación en cuanto a la composición de ácidos grasos del grano (Tood et al., 1973).

Como se señaló en la introducción de este trabajo, algunos autores (Bodrero et al., 2002; Astegiano et al., 2002) señalan a las chinches como causantes del síndrome de retención foliar o tallo verde de soja. Spucches et al. (2006) concluyeron que a mayor aumento de la relación fuente - destino, mayor es la incidencia, la severidad y la retención foliar del Síndrome de Tallo Verde en Soja. A su vez, los mismos autores señalaron que ante una mayor incidencia, severidad y retención foliar del Síndrome del Tallo Verde en soja, menor fue el número de vainas, el número de semillas por planta y el rendimiento por metro cuadrado. El Síndrome de Tallo Verde provoca dificultades mecánicas en la cosecha, pérdida de tiempo, aumento en gastos de combustible y daños a la industria aceitera y molinera (Formento et al., 2005). A su vez, otro aspecto importante a considerar, es que las chinches pueden transmitir enfermedades como hongos y bacterias patógenas de la soja (Giorda & Baigorrí, 1997).

En lo referido a especies, tanto N. viridula y P. guildinii al alimentarse de granos inyectan saliva con enzimas digestivas y succionan el contenido licuado, pero en cuanto a peligrosidad, P. guildinii afecta en mayor medida la calidad y la viabilidad de la semilla que N. viridula, esta característica es atribuida a propiedades bioquímicas de la saliva, al comportamiento de alimentación de P. guildinii y al hongo asociado Nematospora coryli (Saccharomycetales: Eremotheciaceae) (Panizzi, 1997; Corrêa Ferreira & Azevedo, 2002). En Argentina, ensayos realizados comparando las cuatro especies objetivo de esta revisión dio como resultado que P. guildinii provoca daños 1,5 mayores a los que provoca N. viridula, 2,2 veces superiores a los causados por D. furcatus y 3,3 veces por encima de los que ocasiona E. meditabunda (Vicentini & Jiménez, 1977). Según Iannone (1992) P. guildinii puede disminuir el rendimiento de soja en dos veces del que disminuye N. viridula. A su vez, P. guildinii promueve alta retención foliar comparada con N. viridula y E. heros no provoca retención foliar significativa en plantas de soja (Sosa Gómez & Moscardi, 1995).

En lo que respecta al estado de desarrollo de las chinches, Bowling (1980) demostró que el primer estadio de N. viridula no se alimenta, y que las ninfas del cuarto y quinto estadio son similares a los adultos en cuanto a picaduras por día, las cuales rondaron un total de diez. Características físicas de la planta de soja, que varían durante el ciclo de la misma, tales como la dureza del tegumento de la semilla, el espesor de las paredes de las vainas y el espacio de aire entre dichas paredes y la semilla puede influir sobre la alimentación de las especies, más aún en los estados de ninfa cuando los estiletes poseen un menor desarrollo (Kuss Roggia, 2009).

MANEJO INTEGRADO DEL COMPLEJO DE CHINCHES EN EL CULTIVO DE SOJA

El Manejo Integrado de Plagas involucra el conocimiento de la biología y la ecología de las especies plaga siendo definido como un sistema de manejo de las mismas que en contexto del agroecosistema y de la dinámica de población de las especies plaga, utiliza todas las técnicas disponibles con el objetivo de mantener a las poblaciones de plagas en niveles tolerables sobre la base del control biológico, la resistencia varietal y prácticas culturales, pero cuando estas tácticas no alcanzan para cumplir dicho objetivo es necesario tomar medidas terapéuticas (Ves Losada, 2005; Mangudo et al., 2008; Trumper et al., 2008). Así, se hace necesario conocer el ambiente en el que crece la planta, su fisiología de crecimiento y desarrollo, su resistencia o tolerancia a factores críticos del medio, plagas o enfermedades, el efecto de los insectos o enfermedades sobre la fisiología de la planta, especialmente su capacidad de resistir al daño sin sufrir pérdidas económicas (Ves Losada, 2005).

“Adoptar un plan de manejo responsable de chinches plagas en soja, permite evitar problemas de resistencia futuras (Molinari et al., 2013)”. El manejo de plagas, en especial en soja, requiere la aplicación de un criterio técnico, basado en el conocimiento del sistema y sus interacciones, y de responsabilidad social (Igarzábal et al., 2014). Para que se puedan cumplir las premisas del manejo integrado de plagas y realizar un manejo sustentable de las plagas es necesario asentarse sobre herramientas claves como el monitoreo periódico, considerar los umbrales de control objetivos y racionales, recurrir al uso de insecticidas selectivos que no afecten los enemigos naturales, alternar los principios activos a emplear e inspeccionar la calidad de las aplicaciones que se realicen (Sosa & Gamundi, 2008; Molinari et al., 2013).

El manejo integrado de chinches se apoya en cuatro tácticas enmarcadas en el MIP: El monitoreo desde que el cultivo ingresa a su fase reproductiva, utilización de los Umbrales para tomar decisiones de control, la aplicación de insecticidas selectivos y la implementación de franjas trampas. Estas últimas constituyeron una táctica de manejo en la década de 1980 – 1990, combinan el manejo cultural con el manejo químico y reducen en aproximadamente un 90% la aplicación de insecticidas, pero no fueron adoptadas por los productores (Massaro et al., 1983; Gamundi & Sosa, 2008; Sosa & Gamundi, 2008).

Monitoreo

“El muestreo es un componente fundamental en el paradigma de Manejo Integrado de Plagas” (Trumper et al., 2008). El manejo integrado de plagas plantea el muestreo periódico de los cultivos con el objetivo de determinar si la densidad de los insectos presentes alcanza a ser una amenaza de pérdida de rendimiento potencial del cultivo, para así tomar la decisión de la aplicación de una táctica curativa,  por lo tanto la toma de decisiones estará basada en el rendimiento esperado del cultivo, el daño potencial por parte de las plagas y los costos de control (Pedigo, 1994; Kogan, 1998; Frana, 2008).

La densidad de las poblaciones es uno de los atributos emergentes de las mismas y que puede ser definida como el número de individuos promedio de una población por unidad de área o por unidad de hábitat (Southwood, 1978; Pedigo, 1994; Young & Young, 1998; Trumper et al., 2008). Schneider & Gurevitch (2001) establecen que la estimación de la densidad poblacional es necesaria en estudios de comparación de los efectos de intervenciones humanas o de condiciones ambientales.

El método de muestreo más adecuado para estimar la densidad poblacional de chiches y tomar acciones de control es el paño vertical (Massaro & Gamundi, 2009; Gamundi, 1995). Stürmer et al. (2014) muestrearon con paño vertical de un metro de longitud un cultivo de soja sembrado a una densidad de 25 plantas/m² y con una distancia entre hilera de 0,5 metros y concluyeron que existe variabilidad en el tamaño de muestreo (número de puntos de muestreo) cuando estimamos la densidad poblacional promedio de chinches, entre las fases y especies de las chinches y entre los estados fenológicos de la soja. Los mismos autores indican que son necesarios tamaños muestrales pequeños para las ninfas de P. guildinii y etapas fenológicas finales si las comparamos con los adultos de D. furcatus, E. meditabunda, N. viridula, E. heros y Chinavia sp. y con etapas iniciales e intermedias del cultivo de soja. Según ellos, 36 sitios de muestreo son suficientes para estimar la densidad promedio poblacional de las chinches en etapas fenológicas finales con un error de estimación igual al 30% de la media estimada y con un nivel de confianza del 95%.

Se debe realizar el seguimiento periódico de las poblaciones de plagas durante el ciclo del cultivo intensificándose en etapas críticas del cultivo evitando realizar los muestreos en las horas de más altas temperaturas ya que se registra una menor caída (Massaro, 2008; Igarzábal et al., 2014). Una alternativa de monitoreo y control para E. heros es la utilización de trampas con feromonas sexuales (Borges et al., 2011).

Umbrales de Daño

Entre las plagas insectiles que pueden atacar el cultivo de soja, las chinches atraen atención y preocupación ya que con bajos niveles de abundancia pueden provocar un significativo perjuicio económico (Trumper & Edelstein, 2006). “Conocer y aplicar umbrales de tratamiento es una de las normas del Manejo Integrado de Plagas (MIP) (Molinari et al., 2013)”. Sólo las ninfas del cuarto y quinto estadio cuentan en la determinación de los daños y probablemente debido a su tendencia a dispersarse (Trumper & Edelstein, 2006). Los tratamientos realizados a campo no siempre consideran el número de insectos o los daños que los mismos provocan como umbrales para la toma de decisiones (Iannone & Leiva, 1992). Los servicios de extensión e institutos de investigación de las regiones sojeras de E.E.U.U. recomiendan realizar tratamientos de control cuando la soja se encuentre entre los estados fenológicos R4 y R5.5 (Gamundi & Sosa, 2008). Para la toma de decisiones para el manejo de este complejo de chinches se recomiendan los umbrales obtenidos por Gamundi et al. (2003) (Tabla N° 2. Ver apéndice).

La capacidad de producir daño al cultivo de soja difiere entre las distintas especies de chinches citadas. P. guildinii produce el doble de daño por individuo que N. viridula y al menos, ocho veces más respecto a D. furcatus (Iannone, 2012). Para poder compararlas en cuanto a potencial de daño se generó un Índice que asigna el valor 1 al potencial de daño de un individuo de N. viridula, valor 2 para P. guildinii y 0.25 para D. furcatus (Iannone, 2012). Esto equivaldría a decir que dos individuos de chinche verde causarían una magnitud de daño similar al que causaría un individuo de chinche de la alfalfa, y que cuatro de chinche de los cuernos equivaldrían a un individuo de chinche verde en término de gravedad de los daños. Guarino & Bert (2015) también hacen referencia a un índice semejante al de Iannone (2012) al que denominan como Equivalente Chinche Verde (ECV) con algunas diferencias con el índice del autor antes mencionado en cuando a los valores para D. furcatus y a su vez indican el ECV para E. meditabunda (Tabla Nº 3. Ver apéndice).

A partir de estas equivalencias, Guarino & Bert (2015) sugieren, de manera orientativa, prepararse para el control cuando los niveles de chinche alcancen los valores de 1 ECV/m² desde R3 a R6 y de 3 ECV/m² desde R7. Iannone (2012) propone niveles de acción según la especie de chinche, estado fenológico del cultivo de soja y espaciamientos entre hileras (Tabla Nº 4. Ver apéndice).

En Argentina no se conocen umbrales de decisión para E. heros (Molinari et al., 2013) pero en Brasil (UEM, 2003) indican que umbral de daño para esta chinche en soja es de 4 chinches (adultos o ninfas mayores de 0,5 cm) por paño pero, si el cultivo tiene como destino la producción de semillas, el valor se reduce a 2 chinches por paño. Molinari et al. (2013) recomiendan utilizar los Umbrales de daño obtenidos por Gamundi et al. (2003) para las demás especies de chinches citadas en este trabajo.

Control Biológico

Uno de los aspectos fundamentales a considerar en el control de pentatómidos fitófagos son los enemigos naturales (Álvarez Hernández et al., 2008). El Manejo Integrado de Plagas incluye y prioriza al control biológico, el cual debe referirse a la regulación de poblaciones plagas a través de enemigos naturales y consiste en utilizar enemigos naturales para disminuir el daño provocado por organismos nocivos (Molinari, 2005). Los agentes de control biológico cumplen un importante rol en disminuir los ataques de las plagas, pero no siempre alcanzan a evitar infestaciones masivas a tiempo (Aragón, 2002b). Las chinches Pentatomidae son atacadas por enemigos naturales como microorganismos, parasitoides y predadores (Panizzi & Slansky, 1985). Según Molinari et al. (2008) el conocimiento que existe de los enemigos naturales que regulan las poblaciones de chinches Pentatomidae es limitado a pesar de la importancia que revisten en Argentina las mismas.

Algunos organismos, al afectarse sus controladores biológicos con los insecticidas, pueden incrementar su población y convertirse en plagas principales (Igarzábal et al., 2014). Hay dos maneras de aprovechar la acción de los controladores naturales y de favorecerla: respetar los umbrales de tratamiento dándoles tiempo a que se alimenten y reproduzcan y la utilización de productos de acción selectiva (Massaro, 2008).

En nuestro país se desconocen organismos que sean responsables del control biológico de E. heros pero especialistas brasileros, identificaron diversos organismos benéficos (Molinari et al., 2013).

Parasitoides

“Los parasitoides de huevo constituyen el grupo más importante de control biológico de chinches fitófagas” (Igarzábal et al., 2014). La familia más importante de parasitoides oófagos de pentatómidos es Scelionidae (Hymenoptera: Platygastroidea) (Jones, 1988). Los Tachinidae (Diptera) son los parasitoides de chinches adultas más comunes (Molinari et al., 2008), en la Figura N° 10 (Ver apéndice) se puede observar un adulto de N. viridura parasitado por un díptero de esta familia.

En la tabla N° 5 (Ver apéndice) se enlista las especies de parasitoides de las distintas especies de hemípteros del complejo de chinches de la soja. Según La Porta (2007) se debe tener precaución con la especie de parasitoide himenóptera Telenomus mormidae. Molinari et al. (2008) en una comunicación personal con Loiácono fundamentan lo anunciado por La Porta (2007) por la posibilidad de que Telenomus mormidae sea sinonimia de Telenomus podisi.

Para la chinche brasileña no existen registros de parasitoides en Argentina, pero algunos de los parasitoides citados en Brasil (Tabla Nº 6. Ver apéndice) también se encontraron en nuestro país parasitando a otros hemípteros fitófagos (Molinari et al., 2013). Corrêa Ferreira & Panizzi (1982) en Paraná (Brasil) observaron un descenso en la población de chinches debido a un alto parasitoidismo causado por moscas taquínidas (Tachinidae) y microhimenópteros.

Predadores

Las chinches son predadas por arácnidos e insectos de los órdenes Coleoptera, Heteroptera y Neuroptera (Igarzábal et al., 2014). Algunos predadores de chinches son Geocoris pallipes, Tropiconabis capsiformis, Orius tristicolor, Orius insidiosus, Eriopis connexa, Harmonia axiridis, larvas de crisópidos y Podisus nigrispinus (Saini, 1994; Ribeiro & Castiglioni, 2008). Massoni & Frana (2006a) registraron ataques de adultos y ninfas de Geocoris sp., Orius sp., Podisus sp.. Las hormigas pueden observarse alimentándose de desoves de chinches, algunas de las especies observadas con este comportamiendo son Dorymyrmex pyramicus (Rogot), Pheidole magacephala (Fabr.), Solenopsis geminata (Frab.) (Hymenoptera, Formicidae) (Massoni & Frana, 2006a; Alvarez Hernández et al., 2008; Igarzábal et al., 2014). Las aves pueden ser depredadoras de chiches (Panizzi, 2004b). En la tabla N° 7 (Ver apéndice) se enuncian algunos predadores de N. viridula y de P. guildinii.

Medeiros et al. (1997) citaron como predadores de E. heros a Podisus nigrispinus (Dallas), Chrysoperla sp., Nabis sp., Cycloneda sanguinea (L.) y Geocoris sp. Los mismos autores sostienen que los predadores de huevos ocasionan entre 13% y 17% de mortalidad.

Entomopatógenos

Existen en el ambiente organismos como hongos, bacterias y virus que pueden causar enfermedades en los insectos provocando su muerte. Debido al modo de alimentación por succión de las chinches se ha dificultado el uso de bacterias, virus o protozoos en las estrategias de M.I.P. (Sosa Gómez & Moscardi, 1998; Ihara et al., 2008). En la siguiente tabla (Tabla N° 8. Ver apéndice) se muestran algunos hongos entomopatógenos que pueden afectar a Nezara viridula  en Argentina y a Euschistus heros en Brasil. En cuanto a Piezodorus guildinii, Dichelops furcatus y a Edessa meditabunda no se encontraron menciones de entomopatógenos en Argentina para este trabajo.

Control Químico

La sanidad del cultivo de soja en general se ha vuelto dependiente de insumos siendo los insecticidas los principales agroquímicos utilizados y las chinches su principal blanco, convirtiéndose en el cultivo que requiere más insecticidas para su protección dentro de los cereales y oleaginosas (Aragón, 2002b; RIIA, 2005; Sosa & Gamundi, 2008). En Argentina, el control de chinches en soja se realiza únicamente con insecticidas químicos (Sosa & Gamundi, 2008). La falta de nuevas tecnologías para el control de chinches también es preocupante debido al aumento del uso de insecticidas para el control directo de estos insectos (Schünemann et al., 2014). Massaro (2007) establece que los factores que determinan el éxito en el control plagas a través de agroquímicos son la correcta identificación taxonómica de la plaga, la calidad de aplicación, el momento oportuno de aplicación, la identificación del estrato de la planta en el cual se ubica la plaga, el mecanismo de acción del producto fitosanitario a utilizar, las condiciones meteorológicas y la correcta calibración del equipo de aplicación. Las fallas de control estarían asociadas mayormente a la calidad de las aplicaciones (Gamundi et al., 2007).

Los insecticidas neonicotinoides mezclados con piretroides son un control efectivo del complejo de chinches, aunque cabe mencionar que se han observado controles satisfactorios similares a los de las mezclas, por parte de estas familias de insecticidas por separado (Gamundi et al., 2007; Sosa & Gamundi, 2008; Perotti et al., 2010). Sosa & Gamundi (2008) indican que los tratamientos de tiametoxan en mezcla con lambdacialotrina e imidacloprid combinado con betacyflutrina, proveen un buen control pero en dosis de marbete se comportan como poco selectivos. Para el caso de Euschistus heros, los productos mezclas de piretroides y neonicotinoides proporcionan un mejor control, lasmezclas Imidacloprid + Lambdacialotrina, Imidacloprid + Bifentrin, Imidacloprid + Betacifultrina y Tiametoxan + Lambdacialotrina y Tiametoxan + Cipermetrina obtienen resultados satisfactorios en el control de esta especie de hemíptero (Corso, 2003; Altamirano & Candia, 2008; Sosa Gómez, 2009; Da Silva Moreira, 2013).

 Debido a que durante el desarrollo del cultivo de soja pueden utilizarse activos selectivos para el control temprano de orugas defoliadoras tales como, reguladores de crecimiento y diamidas antranílicas, Zantedeschi et al. (2017) probaron algunos de ellos sobre E. heros concluyendo que Lufenuron afecta la supervivencia y  además, esta sustancia y Diflubenzurom reducen la fecundidad en adultos tratados mientras que, Flubendiamida y Bacillus thuringiensis, consecuencia en gran parte a su alta especificidad, no afectan la mortalidad ni la fecundidad de esta chinche.

Existen registros de que esta chinche demostró resistencia a varios insecticidas (algunos de los cuales están actualmente prohibidos en nuestro país) organofosforados (Metamidofos, Acefato, Clorpirifos y Monocrotofos) y a ciclodienos (Endosulfán) dificultando su control químico y aumentando los costos de producción (Sosa Gómez & Omoto, 2012). “Existe sobrada experiencia en el mundo que demuestra que cuando se hace un uso preventivo o no racional de un plaguicida más tarde o más temprano ocurren desequilibrios de difícil resolución” (Gamundi & Sosa, 2008). En cuanto al manejo de la resistencia por parte de las chinches a ambos componentes de una mezcla se recomienda no combinar insecticidas con distinto modo de acción (Denehy & Omoto, 1993). Presionar a las plagas durante todo el ciclo del cultivo con mezclas insecticidas reiteradamente establece un gran riesgo de resistencia cruzada o múltiple (Sosa & Gamundi, 2008). Comprender los mecanismos responsables de los cambios en la susceptibilidad a pesticidas, permitiría distinguir entre los efectos de la plasticidad fenotípica y los cambios genéticos y, a su vez, ayudará a la selección de las medidas apropiadas para el control de plagas insectiles (Stadler et al., 2006). Los factores poblacionales y ambientales son responsables de las variaciones temporales y espaciales de la susceptibilidad de una población a un biocida, así como las coadaptaciones y la coevolución entre herbívoros y sus hospedantes, moldean mosaicos espaciales y temporales de variación genética, lo que hace difícil distinguir entre la plasticidad fenotípica y los cambios de susceptibilidad con una base genética (Scriber, 2002; Stadler et al., 2006). El principal factor de riesgo de resistencia a insecticidas, es la presencia de individuos naturalmente resistentes a un principio activo, en asociación con el incremento en la frecuencia de uso de esa sustancia (Stadler et al., 2006). “La posibilidad de mantener a futuro la eficiencia de los insecticidas utilizados actualmente dependerá del uso racional que hagamos de los mismos en el presente” (Sosa & Gamundi, 2008).

Es muy importante la elección de insecticidas selectivos hacia los enemigos naturales para fomentar las poblaciones de insectos benéficos, el control químico debe permitir la supervivencia de los enemigos naturales y ser efectivo para reducir los insectos plagas, por lo que para lograr un manejo racional de plagas insectiles deben utilizarse los insecticidas con un criterio tal que permite aprovechar al máximo sus beneficios y minimice los efectos colaterales (Aragón, 2002b; Massaro, 2008). En la guía de productos fitosanitarios de CASAFE (2015) figuran registrados distintos activos insecticidas para las especies del complejo de chinche en soja (Tabla N° 9. Ver apéndice).

CONCLUSIONES

Las chinches son uno de los insectos plagas más importantes de soja. Con una baja población pueden causar una gran diversidad de daños con sus correspondientes impactos negativos tanto económicos como de calidad cualquiera fuese el destino de la producción, grano o simiente.

Las especies que conforman el denominado Complejo de Chinches de la Soja en Argentina son P. guildinii, N. viridula, E. meditabunda y D. furcatus. La especie con mayor presencia e importancia en el inicio del cultivo de soja en Argentina fue N. viridula siendo reemplaza a través del tiempo por P. guildinii. Si bien E. heros hasta el momento es una especie que recibe el carácter de plaga de manera ocasional en algunas regiones productoras de soja de Argentina, resulta conveniente estar prevenidos y alertas ante posibles brotes.

Las especies más importantes del complejo comienzan a aparecer en los lotes de soja en coincidencia con la etapa reproductiva del cultivo. La colonización puede realizarse a partir de dos lugares, desde el mismo lote donde las chinches pasan el invierno como adultos resguardándose en el rastrojo de cultivos antecesores o desde lotes vecinos.

La distribución en el cultivo parece ser agregada en estados ninfales variando a aleatoria en la adultez. En cuanto a su disposición en la planta, esta depende de la especie de hemíptero que se trate con sus respectivas características de comportamiento, la densidad de chinches en la soja y de las condiciones ambientales en el interior de la canopia del cultivo cómo temperatura y humedad relativa. El tipo de cultivar (determinado o indeterminado) también influye, pero no tiene relevancia práctica ya que los cultivares utilizados en Argentina en la actualidad son del tipo indeterminado.

El Manejo Integrado de las chinches en soja comprende un conjunto de tácticas de diversas características con el objetivo de mantener la densidad poblacional de estas plagas en los niveles aceptables de una manera que sea socialmente aceptado, ecológicamente amigable y económicamente rentable. Lo cual no implica, la prohibición en la utilización de los productos fitosanitarios, sino que estos deberían utilizarse de una manera curativa y responsable. Tal es así que el presente trabajo enumera una lista de ingredientes activos para el control de chinches en el cultivo de soja (CASAFE, 2015). Las bases del manejo integrado son el monitoreo de las plagas y los umbrales de daño. En cuanto al monitoreo, el método del paño vertical es el más aceptado, la revisión de los lotes debería realizarse desde etapas tempranas del cultivo con énfasis en la etapa reproductiva del mismo, momento en que la población de chinches aumenta cuantiosamente. Con respecto a los umbrales de daño, en el presente estudio se dan algunas referencias de los mismos, cabe señalar que creo necesario la adecuación de los mismos a la situación particular de cada lote o región.

Un método relevante para el control de plagas y que debe prestarse una importancia mayor a la que creo que actualmente se le da es el Control Biológico ya que es un servicio “gratuito” que la naturaleza nos ofrece para mantener las poblaciones de plagas en un nivel aceptable con la producción, además de ser inocuo para el medio ambiente. Existen una gran variedad de enemigos naturales de las chinches en el cultivo de soja y creo conveniente su cuidado y fortalecimiento. Para aprovechar este servicio ambiental deberíamos respetar los umbrales de tratamiento, utilizar insecticidas selectivos como también ampliar las investigaciones de la biología y etología de estos organismos benéficos para lograr la complementación entre distintos tipos de tácticas de manejo de plagas.

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APÉNDICE

Figura 1. Piezodorus guildinii. Huevos sobre vainas de soja. Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2017)

Figura 2. Piezodorus guildinii. Huevos sobre hoja de soja recién eclosionados junto a ninfas de estadio I recién nacidas. Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W (2017).

Figura 3. Piezodorus guildinii. Adulto. Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2016)

Figura 4. Nezara viridula. Adulto, forma smaragdula sobre soja. Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2016).

Figura 5. Huevos de Nezara viridula sobre soja. Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2016).

a

b

Figura 6. Nezara viridula. a) Ninfas en estadio III (Forma Oscura). b) Estadio ninfal V. (Fotos: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2015).

a

b

Figura 7. Edessa meditabunda a) Ninfas de estadio I recién nacidas juntos a los huevos eclosionados (Imagen capturada con microscopio de la cátedra de Zoología Agrícola (U.N.L.Pam). b) Estadio ninfal IV. Fotos: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (S/Fa - 2017b).

Figura 8. Edessa meditabunda. Adulto. Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2017).

Figura 9. Adulto de Dichelops furcatus. Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2017).

Figura 10. Nezara vididula. Adulto parasitado por una mosca de la familia Tachinidae. (Observar el Huevo sobre el dorso del hemíptero). Foto: Ing. Agr. Guillot Giraudo, W. (2017).

Tabla 1. Daños de chinches según etapa fenológica del cultivo de soja (Igarzábal et al., 2014).

Estado Fenológico

Daños

Observaciones

VE – VC

Picadura en hipocótilo.

Puede reducir vigor de la plántula.

–

V1 – Vn

Picadura de tallos y hojas.

Pocos síntomas específicos.

No hay influencia sobre el rendimiento.

R1 – R3

Aborto de flores y vainas recién formadas.

Retención foliar.

No específico de chinches.

R4 – R5

Detención del crecimiento – Vaneo.

Pérdida de tamaño y peso de semillas.

Arrugado y manchado.

Afección del poder germinativo y vigor.

Retención foliar.

Etapa de mayor susceptibilidad.

R6 – R7

Manchado y arrugado del tegumento.

Afección del poder germinativo y vigor.

Influye en la calidad especialmente.

Tabla 2. Umbrales económicos para el complejo de hemípteros que atacan al cultivo de soja durante el periodo reproductivo R3 – R5.5. (*) (**). (Gamundi et al., 2003).

Chinches . m⁻¹ de surco

Espaciamiento entre surcos (Cm).

Cultivares GM III, IV y V indeterminados.

Cultivares GM VI y VII determinados

26 a 35

0,4

0,8

52

0,7

1,4

70

1,0

2,0

(*) Desde R6 a R7 estos valores deben multiplicarse por 3.

(**) En los cultivos que se destinen a producción de semillas los valores de la tabla deben reducirse a la mitad y aplicarse para todo el periodo reproductivo.

GM: Grupos de Madurez

Tabla 3. Equivalente Chinche verde para las distintas especies de Chinches (Guarino & Bert, 2015).

Un Individuo Adulto o Ninfa de 4to y 5to estadio de:

Equivalente Chinche Verde:

Nezara viridula (Chinche Verde)

1.0

Piezodorus guildinii (Chinche de la alfalfa)

2.0

Edessa meditabunda (Alquiche)

1.0

Dichelops furcatus (Chinche de los cuernitos)

0.33

Tabla 4. Niveles de acción según la especie de chinche, estado fenológico del cultivo de soja y espaciamientos entre hileras (Iannone, 2012)

PLAGA

N D E (nº individuos/m) (a)

R3 – R4

Formación de Vainas

R5

Formación de granos

R6 – R7 (b)

Después de Grano

Espaciamiento (Cm)

Espaciamiento (Cm)

Espaciamiento (Cm)

70

52

42

35

70

52

42

35

70

52

42

35

Piezodorus guildinii (Chinche de la alfalfa)

0.6

0.4

-0.5

0.3

- 0.4

0.3

1

0.7

0.6

0.5

3

2

1.7

1.5

Nezara viridula (Chinche Verde)

0.8-1

0.7

0.6

0.5

2

1.5

1.2

1

5

3-4

2.8

2.5

Edessa meditabunda (Alquiche) (valores estimados)

1.5

1.1

0.9

0.7

-0.8

3

2.2

1.8

1.5

7

-

8

5.5

4.5

3.5

-

4

Dichelops furcatus (Chinche de los cuernos)

(valores estimados)

3.0

2.2

1.8

1.5

8

6

5

4

12

9

7.2

6

En caso de mezcla de chinches, prorratear valores; (b) En soja para semilla los umbrales en R6 - R7 son los mismos que en R5.

Tabla 5. Listado de parasitoides por huésped del complejo de chinches de la soja.

Especie de Chinche Hospedera

Especie del Parasitoide

Orden de insecto Parasitoide

Bibliografía

Edessa meditabunda F.

Bicyrtes discisa (Tachenberg)

Hymenoptera

De Santis & Esquivel (1966)

Gryon scutellatus (Masner)

Hymenoptera

La Porta (2007)

Hexacladia smithii

Hymenoptera

Cuezzo & Fidalgo (1997)

Neobrachelia sp.

Diptera

Parker et al. (1951/52).

Telenomus podisi (Ashmead)

Hymenoptera

La Porta (2007)

Telenomus sp.

Hymenoptera

D'Araujo e Silva et al. (1967 - 1968)

Trichopoda giacomelli (Blanchard) Guimaraes 1971

Diptera

Molinari (2005)

Trissolcus basalis (Wollaston)

Hymenoptera

La Porta (2007); La Porta & Crouzel (1984)

Trissolcus caridei Bréthes.

Hymenoptera

Molinari & Gamundi (2005); De Santis & Esquivel (1966)

Trissolcus urichi (Crawford)

Hymenoptera

La Porta (2000); La Porta (2007); Cingolani et al. (2014)

Xenopyxis edessae Tns.

Diptera

Parker et al. (195/52).

Piezodorus Guildinii West.

Eutrichopodopsis nitens Blanchard

Diptera

Panizzi & Smith (1976)

Telenomus mormidae Costa Lima

Hymenoptera

Molinari & Gamundi (2005); Fraga & Ochoa (1972); Brewer et al. (1976); Aragón et al. (1997)

Telenomus podisi (Ashmead)

Hymenoptera

Molinari et al. (2008); Foerster & Queiroz (1990); La Porta (2007); Cingolani et al. (2014)

Trissolcus basalis (Wollaston)

Hymenoptera

La Porta (2007); Cingolani et al. (2014)

Trissolcus scuticarinatus (Costa Lima)

Hymenoptera

Rizzo (1976)

Trissolcus urichi (Crawford)

Hymenoptera

Cingolani et al. (2014)

Nezara viridula L.

Eutrichopodopsis nitens Blanchard

Diptera

Gastal (1977a); Gastal (1977b); Blanchard (1966)

Telenomus sp.

Hymenoptera

Molinari & Gamundi (2005)

Trichopoda giacomelli (Blanchard) Guimaraes 1971

Diptera

Molinari & Gamundi (2005); Coombs (2004); La Porta & Crouzel (1984); La Porta (1990); Liljeström (1993); Aragón (2002b).

Trichopoda gustavoi

Diptera

Mallea et al. (1978)

Trichopodopsis sp.

Diptera

Rizzo (1976)

Trissolcus basalis (Wollaston)

Hymenoptera

Molinari & Gamundi (2005); Colazza & Wajnberg (1998); Molinari et al. (2008);  Crouzel & Saini (1983); La Porta & Crouzel (1984); La Porta (1992); La Porta (2007); Cingolani et al. (2014)

Dichelops Furcatus (F.)

Telenomus podisi (Ashmead)

Hymenoptera

La Porta (2007)

Trissolcus basalis (Wollaston)

Hymenoptera

La Porta (2007)

Trissolcus teretis (Johnson)

Hymenoptera

La Porta (2007)

Trissolcus urichi (Crawford)

Hymenoptera

La Porta (2000); La Porta (2007); Cingolani et al. (2014)

Tabla 6. Listado de parasitoides de Euschistus heros en Brasil.

Especie de Chinche Hospedera

Especie del Parasitoide

Orden de insecto Parasitoide

Bibliografía

Euschistus heros (F.)

Eupelmus sp.

Hymenoptera

Medeiros et al. (1997); Molinari et al. (2013).

Gryon obesum Masner

Hymenoptera

Corrêa Ferreira & Moscardi (1995).

Gymnoclytia paulista Towsend

Diptera

Corrêa Ferreira (1984).

Gymnoclytia sp.

Diptera

Ferreira Agüero et al. (2018).

Hexacladia smithii Ashmead

Hymenoptera

De Corrêa Ferreira et al. (1998); Peres & Corrêa Ferreira (2001).

Neorileya ashmeadi Crawford

Hymenoptera

Corrêa Ferreira & Moscardi (1995).

Ooencyrtus sp.

Hymenoptera

Corrêa Ferreira & Moscardi (1995).

Telenomus mormideae Costa Lima

Hymenoptera

Foerster & Queiroz (1990).

Telenomus podisi (Ashmead)

Hymenoptera

Foerster & Queiróz (1990); Corrêa Ferreira & Moscardi, (1995); Medeiros et al. (1997); Corrêa Ferreira et al. (1998); Peres & Corrêa Ferreira (2001); Sujii et al. (2002); Cavalcante Silva et al. (2008); Duarte & Zabala (2008); Molinari et al. (2013).

Trichopoda gicomellii (Blanchard)

Diptera

Mourâo & Panizzi (2000).

Trissolcus basalis (Wollaston)

Hymenoptera

Foerster & Queiróz (1990); Corrêa Ferreira & Moscardi (1995); Medeiros et al. (1997); Corrêa Ferreira et al. (1998); Peres & Corrêa Ferreira (2001); Molinari et al. (2013).

Trissolcus teretis (Johnson)

Hymenoptera

Medeiros et al. (1997); Molinari et al. (2013).

Trissolcus urichi (Crawford)

Hymenoptera

Corrêa Ferreira & Moscardi (1995); Medeiros et al. (1997); Molinari et al. (2013)

Tabla 7. Predadores de N. viridula y de P. guildinii.

Especie de Chinche

Especie del Predador

Orden de insecto Predador

Bibliografía

Nezara viridula

Podisus maculiventris

Hemiptera

Lockwood & Story (1986)

Hormigas

Hymenoptera

Frana et al. (2008).

Solenopsis invicta Buren

Hymenoptera

Panizzi (2004b)

Podisus nigrispinus

Hemiptera

Vitti et al. (2008)

Piezodorus guildinii

Podisus nigrispinus

Hemiptera

Vitti et al. (2008)

Geocoris pallipes

Hemiptera

Ribeiro & Castiglioni (2008); Bentancourt & Scatoni

(2001)

Chrysopidae

Neuroptera

Ribeiro & Castiglioni (2008)

Tropiconabis capsiformis

Hemiptera

Ribeiro & Castiglioni (2008)

Orius tristicolor

Hemiptera

Ribeiro & Castiglioni (2008)

Orius insidiosus

Hemiptera

Ribeiro & Castiglioni (2008); Bentancourt & Scatoni

(2001)

Eriopis connexa

Coleoptera

Ribeiro & Castiglioni (2008)

Harmonia axiridis

Coleoptera

Ribeiro & Castiglioni (2008)

Hormigas

Hymenoptera

Ribeiro & Castiglioni (2008)

Avispas

Hymenoptera

Ribeiro & Castiglioni (2008)

Tabla 8. Hongos entomopatógenos que afectan a las distintas especies de hemípteros del complejo.

Especie de Chinche

Especie de Entomopa-
tógeno

Clasificación Taxonómica

Tipo de entomo-
patógeno

Bibliografía

Nezara viridula L

Beauveria bassiana

Ascomycota: Cordycipitaceae

Hongo

Agro 2.0 (2012); Devotto et al. (S/F)

Metarhizium anisopliae

Ascomycota: Clavicipitaceae

Hongo

Devotto et al. (S/F)

Euschistus heros (F.)

Beauveria bassiana (Bals.) Vuill.

Ascomycota: Cordycipitaceae

Hongo

Moscardi et al. (1988); Sosa Gómez & Moscardi (1998); Molinari et al. (2013); Oliveira et al. (2016)

Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorok.

Ascomycota: Clavicipitaceae

Hongo

Moscardi et al. (1988); Sosa Gómez & Moscardi (1998); Molinari et al. (2013); Oliveira et al. (2016)

Tabla 9. Principios activos registrados para el control de las distintas especies del complejo de chinches fitófagas en el cultivo de soja en Argentina (CASAFE, 2015).

* Comité de Acción de Resistencia a Insecticidas (IRAC, por sus siglas en inglés).

Especie plaga

Grupo Química

Grupo IRAC*

Activos

Piezodorus guildinii

Organofosforado

1B

Acefato

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Acetamiprid + Esfenvalerato

Piretroide + Neonicotinoide

3A + 4A

Bifentrin + Imidacloprid

Piretroide

3A

AlfaCipermetrina

Organofosforado

1B

Dimetoato

Piretroide

3A

Bifentrin

Piretroide + Carbamato

3A + 1A

Bifentrin + Carbosulfan

Piretroide + Piretroide

3A + 3A

Bifentrin + Zetametrina

Piretroide

3A

Deltametrina

Piretroide + Organofosforado

3ª + 1B

Cipermetrina + Clorpirifos

Dichelops furcatus

Organofosforado

1B

Mercaptotion

Organofosforado

1B

Acefato

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Imidacloprid + Lambdacialotrina

Piretroide + Organofosforado

3A + 1B

Esfenvalerato + Fenitrotion

Nezara viridula

Organofosforado

1B

Acefato

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Acetamiprid + Esfenvalerato

Piretroide + Neonicotinoide

3A + 4A

Bifentrin + Imidacloprid

Piretroide

3A

AlfaCipermetrina

Piretroide

3A

BetaCipermetrina

Piretroide

3A

Bifentrin

Piretroide + Carbamato

3A + 1A

Bifentrin + Carbosulfan

Piretroide + Piretroide

3A + 3A

Bifentrin + Zetametrina

Piretroide

3A

Cipermetrina

Piretroide + Organofosforado

3A + 1B

Cipermetrina + Clorpirifos

Edessa meditabunda

Organofosforado

1B

Acefato

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Imidacloprid + Betaciflutrina

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Imidacloprid + Bifentrin

Neonicotinoide + Organofosforado

4A + 1B

Imidacloprid + Clorpirifos

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Imidacloprid + Lambdacialotrina

Organofosforado

1B

Mercaptotion

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Tiametoxan + Lambdacialotrina

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Tiametoxan + Zetametrina

Piretroide

3A

Zetametrina

Euschistus heros

Organofosforado

1B

Acefato

Neonicotinoide + Piretroide

4A + 3A

Imidacloprid + Betaciflutrina

VITA

Guillot Giraudo, Walter

Nacido el 18 de noviembre de 1988 en la ciudad de General Pico, La Pampa (L.P.), Argentina. Realizó sus estudios primarios en la Escuela N° 75 y secundarios en el Instituto Privado Lucio V. Mansilla de la Localidad de la localidad de Caleufú (L.P.). Cursó sus estudios universitarios en la Facultad de Agronomía (U.N.L.Pam) en la ciudad de la Santa Rosa alcanzando su título de grado como Ingeniero Agrónomo y de posgrado como Especialista en Manejo Integrado de Plagas en Cultivos Extensivos, en cuyo marco desarrolló el Trabajo Integrador Final presentado en esta publicación. En la mencionada institución, se desempeñó como ayudante de segunda, ayudante de primera y adscripto (ad honorem) en la Cátedra de Zoología Agrícola. Actualmente es Becario Doctoral INTA - CONICET en la Estación Experimental Agropecuaria Anguil “Guillermo Covas”, del Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA).

Datos de Contacto:

Teléfono: 02954 - 495057 (Int. 428)

Email: guillot.walter@inta.gob.ar